10%綿羊紅細胞的核心信息

一、產品本質與制備工藝

10%綿羊紅細胞是經無菌處理的綿羊血液制品，其核心制備流程包括：

無菌采血：從健康綿羊頸靜脈采集抗凝血液，避免污染。

脫纖維處理：通過玻璃珠搖床或離心法去除纖維蛋白原，防止血液凝固。

紅細胞分離與洗滌：離心后獲取紅細胞沉淀，用PBS或阿氏液（含葡萄糖、檸檬酸鈉等）洗滌2-3次，去除血漿蛋白和白細胞，最終配制成10%濃度懸液（即每100ml懸液含10ml壓積紅細胞）。

無菌過濾與分裝：采用0.1μm微孔濾芯過濾，確保無菌性，分裝于滅菌容器中。

關鍵參數：

濃度：10%（v/v），適用于多數免疫學實驗。

保存條件：2-8℃避光保存，避免凍融（凍融會導致紅細胞破裂，溶血率升高）。

有效期：通常為1個月（部分產品經特殊處理可延長至1年，需以供應商說明為準）。

內毒素標準：優質產品內毒素含量＜10EU/ml，降低對實驗結果的干擾。

二、核心實驗用途與操作要點

溶血素制備與溶血實驗原理：綿羊紅細胞作為抗原，刺激動物免疫系統產生溶血素（抗體），通過補體介導的溶血反應檢測抗體效價。

操作：免疫動物（如兔、小鼠）注射綿羊紅細胞，定期采血分離血清。

將血清與綿羊紅細胞混合，加入補體（如豚鼠血清），觀察溶血現象。

通過比色法測定溶血程度，計算抗體效價。

應用：疫苗效價評價、補體活性檢測、自身免疫病研究。

血型鑒定與交叉配血試驗原理：利用紅細胞表面抗原與對應抗體的特異性結合，通過凝集反應判斷血型。

操作：將待測血清與綿羊紅細胞混合，觀察是否凝集（綿羊紅細胞為O型，無A/B抗原，可用于反向定型）。

交叉配血時，將供體紅細胞與受體血清混合，檢測是否存在不相容抗體。